一、实验要求

实验对象：目标体系为modeller或其他方法建模的结果中评价最好的模型。

软件： Gromacs-5.1.2

二、实验步骤

1. 加立场

gmx pdb2gmx –h 打开帮助菜单。 选力场的时候选择 Amber99sb…,溶剂类型选Tip3p。

2、加模拟盒子，溶剂层厚度为0.8nm。

gmx editconf -bt ( boxtype: 做三个盒子的对比cubic/triclinic/dodecahedron ), -d 0.8 , 比较三种类型的盒子水分子数目差别。

3、加水溶剂。

gmx solvate –h

4、做能量优化。 参数文件：em.mdp（可从官网上下载） etol: 500，达到收敛，该步骤完成。

5、平衡体系，将体系升温。 从0K升温到300K，在30ps内完成。

6、动力学模拟采样。模拟时间：1ns，步长：2fs。坐标保存的频率为每10ps保存一帧结果，整个轨迹共100个frame.

7、结果分析:

7.1. 全体系的alpha-C原子的均方根偏差(RMSD)结果获取及分析，gmx rms 。

7.2. 全体系的alpha-C原子的均方根涨落(RMSF)结果获取及分析, gmx rmsf。

7.3. 体系的总势能变化曲线分析，采用g_energy命令。

7.4. 分析蛋白质的回旋半径变化，采用g_gyrate命令

7.5. 将采样最后的构象与初始构象进行叠加比较，分析构象的变化情况。

7.7. 从模拟的轨迹中将体系中的蛋白质单独取出来，另存为一个轨迹文件protein.xtc, 用VMD的插件”movie maker”做成一个小电影。

三、操作过程记录及结果

Step1: 输入如下命令，在命令行的交互式操作中，选择力场(输入5)AMBER99SB protein，选择溶剂模型(输入1)：TIP3P

gmx pdb2gmx -f CCM.B99990002.pdb -o conf.gro -p topol.top

选择力场和溶剂模型后出现如下屏幕回显（部分）：

 

 

Step2：加盒子。输入如下命令：分别加三个模拟盒子，比较三种类型的盒子水分子数目差别

gmx editconf -f conf.gro -bt cubic -d 1.0 -o cubic_out.gro

gmx editconf -f conf.gro -bt triclinic -d 1.0 -o triclinic_out.gro

gmx editconf -f conf.gro -bt dodecahedron -d 1.0 -o dodecahedron_out.gro

 

 

 

 

 

 

Step3：加溶剂。

gmx solvate -cp cubic_out.gro -o cubic.pdb -p topol.top

gmx solvate -cp triclinic_out.gro -o triclinic.pdb -p topol.top

gmx solvate -cp dodecahedron_out.gro -o dodecahedron.pdb -p topol.top

 

 

 

 

 

 

cubic_out.gro

triclinic_out.gro

dodecahedron_out.gro

53895

27862

37244

可以发现立方体盒子里水分最多。

Step4：做能量优化， etol: 500，达到收敛，该步骤完成。

从官网上下载一个em.mdp的例子文件，下载地址如下

http://www.bevanlab.biochem.vt.edu/Pages/Personal/justin/gmx-tutorials/complex/Files/em.mdp 检测离子平衡

输入如下命令，检测体系的离子平衡：

gmx grompp -f em.mdp -c cubic.pdb -p topol.top -o cubic_em

检测结果如下：发现需要添加四个负离子

 

 

Step5:添加离子,发现总共是4个正电荷，需要加4负电荷 添加离子命令：

gmx genion -s cubic_em.tpr -o ION.gro -p topol.top -nn 4 -pname NA 选择（SOL)

 

 

加离子后：

 

 

Step6:再次检测离子平衡,使用新的文件ION.gro进行检测：

gmx grompp -f em.mdp -c ION.gro -p topol.top -o cubic_em.tpr

 

 

能量最小化：

gmx mdrun -s cubic_em.tpr -deffnm cold -v

 

 

能量查看（potential)

gmx energy -f cold.edr -o cold.xvg

 

将cold.xvg导入Excel绘制能量曲线图，看能量是否降低，如下图：

可以发现能量确实降低了。

 

 

Step7:平衡体系，将体系升温。 从0K升温到300K，在30ps内完成

根据生成的mdout.mdp文件，创建uprade.mdp,将体系升温至300k，步长为15000，改步长：

 

gmx grompp -f upgrade.mdp -c cold.gro -p topol.top -o cubic_em_hot.tpr 回显如下：

 

 

gmx mdrun -s cubic_em_hot.tpr -v -deffnm hot 回显如下：

 

 

然后进行能量查看（选择tempratrue)：

gmx energy -f hot.edr -o hot.xvg 回显如下：

 

 

将hot.xvg导入excel表格发现确实升到了300k

 

 

Step6: 体系采样

gmx grompp -f sample.mdp -c hot.gro -p topol.top -o cubic_em_hot_sample.tpr

 

 

sample.mdp需要根据老师要求进行修改，修改地方如下：

模拟时间：1ns，步长：2fs。坐标保存的频率为每10ps保存一帧结果，整个轨迹共100个frame

输入命令：gmx mdrun -s cubic_em_hot_sample.tpr -v -deffnm hot_sample

 

 

能量查看(temperature)，能量确实达到了300K（约等于）

gmx energy -f hot_sample.edr -o hot_sample.xvg

 

Step7:结果分析与讨论

1、全体系的alpha-C原子的均方根偏差(RMSD)结果获取及分析

输入如下命令：gmx rms -s cubic_em_hot_sample.tpr -f hot_sample.trr -o rmsd.xvg

 

 

RMSD值可以反应出模拟过程中体系的稳定情况，将rmsd.xvg导入EXCEL表，绘折线图，由图可知动力学模拟逐渐达到平衡。

 

1. 全体系的alpha-C原子的均方根涨落(RMSF)结果获取及分析

输入如下命令：gmx rmsf -s cubic_em_hot_sample.tpr -f hot.trr -o rmsf.xvg

 

 

RMSF计算每个原子相对于其平均位置的涨落, 表征了结构的变化对时间的平均, 给出了蛋白各个区域柔性的表征, 对应于晶体学中的b因子(温度因子). 通常, 我们预期RMSF和温度因子类似, 这可以用于考察模拟结果是否与晶体结构符合。

 

 

3、体系的总势能变化曲线分析

gmx energy -f hot_sample.edr -o potential.xvg

 

 

可以看出总势能总体在波动 ：

 

 

4、分析蛋白质的回旋半径变化(只绘制了半径的曲线图)

gmx gyrate -f hot_sample.trr -s cubic_em_hot_sample.tpr -o gyrate.xvg

 

 

回旋半径是描述蛋白质紧密型的一个物理量，半径越小说明致密性越好，，即蛋白质结构就越稳定。

分析蛋白质的回旋半径变化(只绘制了半径的曲线图)，如图第一列是蛋白质的回旋半径：

由图可看出蛋白质的回旋半径有逐渐变小。

 

 

 

 

5、分析溶剂的可及表面积（SASA）选择SOL

gmx sasa -f hot_sample.trr -s cubic_em_hot_sample.tpr -o area.xvg

它是描述蛋白质疏水性的重要手段，氨基酸残基的疏水性是影响蛋白质折叠的重要物理作用

 

 

 

 

6、将采样最后的构象与初始构象进行叠加比较，分析构象的变化情况

gmx confrms -f1 ION.gro -f2 hot_sample.gro -o fit.pdb

感觉用肉眼看不太出来，变化不太大。

 

 

Step8:VMD小电影制作

用最新生成的liuwanlin.pdb做vmd小电影。

导入pdb——选择Extension->visualization->movie maker，Movie duration(seconds)设置生成视频的总时长，设定20s，使用录屏软件录小视频。

 

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